随着养猪业的不断发展，人工授精技术不断推广。在我国，养猪主产区人工授精率达85%以上[1]。在欧洲，2017年有超过1 210万头母猪和18万头公猪用于人工授精，超过93%的养猪企业使用人工授精。通常情况下，如果每份精液剂量有30亿～35亿有效精子，1头公猪每年可生产1 500～1 750份精液[2]。而随着猪子宫内输精技术的推广，有效降低了单头母猪每次人工授精的精子使用量[3]，从而相对提高了公猪精液产量，提升了公猪利用率。保证优良精液品质应用，充分利用优良公猪是保证人工授精提高猪场经济效益的重要举措。因此准确评价公猪繁殖能力，及时发现问题采取相应举措是种公猪管理的重要措施。笔者认为，目前对公猪繁殖能力评定可以分为以下几个方面：体外受精能力评定即细胞水平评定[4]、人工授精后繁殖能力评定、分子水平评定以及其他标记物评定。文章对目前及今后公猪繁殖性能评价的一些方法做一综述。

1 细胞水平评定

细胞水平评定，即目前养猪生产过程中使用的精液品质评定，这也是对公猪繁殖性能常规评价中是最直观最快速的评定方法。精子的活力和正常形态率与公猪的生育能力存在着相关性[5-6]。因此，公猪精液生产过程中常规的衡量性状为：精液量、活力、密度、畸形率、颜色、气味等。精液量一般根据精液重量，按照水的密度1 g/mL换算为体积，公猪射精过程一般7～15 min，分2～3个射精阶段，精液量一般在150～300 mL，量大者甚至能达1 000 mL。活力指在37 ℃下呈直线运动精子占总精子数的百分率，一般认为直线运动的精子新陈代谢正常，膜未受损。密度即每mL精液中精子数量，公猪一次射精的精子总数可达100亿～1 000亿，密度一般在1.5亿～3亿/mL。畸形率即畸形精子占精子总数的百分率，畸形精子种类较多，一般分为头部畸形、中段异常、尾部畸形和原生质滴畸形，畸形精子不具有受精能力，畸形精子通常在公猪产生应激或者损失后出现。公猪精液的颜色一般为乳白色或浅灰色，与精子浓度有关，浓度越高精液颜色越深；异常颜色有红色或者黄绿色，为混有血液或尿液。猪精液正常气味为略带腥味，混有尿液或者存在炎症后会有尿臊味或腥臭味。

精液各性状的检测评定方法因不同的时期、不同的使用单位、不同的需求而有所差异，同时也在不断进步。国家2010年正式发布《种猪常温精液国家标准》，在该标准中检测法是使用显微镜观测精子活力，血球计数板法测定直线前进运动精子数，吉姆萨染色法测定畸形率。该方法虽然计数准确，但是在实际生产中费时费力。生产中可以使用分光光度计测定精子密度，利用波长为550 nm光线照射精液，根据精液对光的吸收程度换算精液的密度。目前国内各大公猪站普遍使用计算机辅助精液分析系统（Computer aimed sperm assay,CASA）对精液品质进行检测分析。CASA采用先进的动态图像处理技术、计算机视频处理技术自动完成对精子的计数、活力分析、精子运动轨迹等进行统计分析，并输出精液质量检测报告（图1）。赵鹏等[7]对比发现，CASA可以准确测定精子活力、直线前进运动精子数等。现代的CASA系统除分析精子运动参数外，可以评估浓度、形态和活力，分析精子的运动轨迹和运动路径。此外，Androvision、IVOS、CEROS、SCA和Isa具有特定的公猪精子分析程序[8]。使用CASA进行分析，相对于人工检测更加客观、准确、快速，它能够揭示出肉眼无法察觉的运动能力的细微差别。根据实际生产的需要，CASA仪器的迭代也是迅速和正在进行的。在商业公猪精液生产中，对正常精液的要求通常是：活力≥70%，畸形率≤18%，总精子数30亿～35亿，剂量80～100 mL[9]。

2 人工授精效果评价

人工授精后的公猪的繁殖能力评定主要是根据母猪的受胎及分娩情况，以及后代的生产繁殖情况对公猪繁殖性能进行衡量。该数据在实际生产中获取较为容易，但是需要的时期较长。在试验分析中，国外数据多用60 d非复配率及窝均产总仔数衡量精液对人工授精效果的影响[10]，国内一般是分析精液或公猪对人工授精后母猪的受胎率、分娩率、产仔数及繁殖效率（头/胎，单头公猪参配母猪产仔数总和与该公猪配种母猪总胎数的比值）等情况[11]。

在目前使用的猪场管理软件主要是针对母猪群进行管理，针对公猪管理的软件相对较少，多数管理软件支持数据的录入及导出，以及一些简单的分析，但是主要是针对猪只个体的配种受胎情况。一般CASA分析里面会有公猪管理系统，但是一般是针对个体年龄分布及精液品质分析预警等，但是对于配种情况无法跟踪。笔者认为，各规模猪场的管理软件需要加大对公猪繁殖性能的分析，例如采精情况（包括采精间隔、使用日龄，精液体积、密度、活力、畸形率）及配种分娩情况（配种头数、妊检异常率、受胎率、分娩窝数、分娩率、窝产仔数情况等），一般分品种、批次、时间段等分析，或对个体进行追踪分析。